Отдел бактериологических исследований

Исследование мазков крови — это довольно распространенный метод, позволяющий быстро диагностировать многие часто встречающиеся нарушения. Основными условиями эффективного использования этого метода диагностики являются строгое соблюдение техники подготовки мазка и систематическое исследование с соблюдением алгоритма.

На практике далеко не всегда удается в рамках использования гематологической быстрой диагностики получать объективные данные. Исследование мазка крови дает возможность относительно быстро уточнять и дополнять полученную информацию. Эта методика позволяет выявлять некоторые элементы, не проявляющиеся при проведении клинических автоматизированных исследований, к примеру, изменение эритроцитной формы наряду со сдвигом лейкоцитарного показателя влево, то есть в сторону незрелого нейтрофила, или наличие паразитов. В некоторых ситуациях эта техника позволяет поставить окончательный диагноз.

Для чего используют этот анализ?

Для таких целей:

• В рамках определения нарушений формы и размера, а также изменений числа эритроцитов, тромбоцитов, лейкоцитов и различных типов кровяных элементов (включая любые незрелые формы) наряду с их процентным соотношением.
• Для диагностики разных заболеваний, связанных с нарушениями образования, функций или с избыточным разрушением форменного элемента.
• Для того чтобы отслеживать формирование клеток со степенью их зрелости при лейкозе, после лучевого лечения, а также в рамках нарушения образования гемоглобина.

Когда назначают данное исследование?

В том случае, если по результату общего анализа и лейкоцитарной формулы (что назначается по наиболее широкому кругу показаний), выявляется значительное повышение количества лейкоцитов, атипичных или незрелых клеток, тогда необходимо сделать мазок крови. Помимо прочего подобное исследование важно осуществлять в ряде таких ситуаций:

• На фоне подозрения на заболевание, которое влияет на клетки.
• При употреблении лекарств, способных повлиять на их производство.

В рамках проведения анализа мазка крови медики, как правило, применяют венозную либо же капиллярную биологическую жидкость.

Подготовка

При заборе биоматериала со средним диаметром расширения вены кровь поступать должна быстро в пробирку, которая содержит антикоагулянт. Часто используют этилендиаминтетраацетат, потому что он дает возможность лучше сохранять исследуемый форменный элемент. Правда, для упреждения различного рода морфологических деградаций клеток временной промежуток между взятием свежего и хорошо гомогенизированного биоматериала и изготовлением препарата должен быть, насколько это возможно, коротким.

Подготовка мазков начинается с забора капли крови (как правило, всего одной из капиллярной трубки) на краешек предметного стекла для микроскопа. Затем ее размазывают посредством второго стеклянного элемента, скользящего по первому. Хорошо подготовленный мазок обладает в конце так называемым «языком кошки», указывающим на то, что образец был выполнен корректно и дает возможность провести обследование качественно.

Общий анализ крови: цель и техника проведения

Обследование пациента обычно начинается с опроса больного врачом на предмет определенных жалоб, что составляет субъективную оценку состояния пациента.

Для уточнения, подтверждения или опровержения полученных сведений проводится объективная оценка, основанная на данных лабораторной диагностики.

Результаты лабораторных тестов позволяют не только своевременно поставить точный диагноз, но и оценить качество проведенной терапии.

Общеклиническое исследование крови – один из важнейших диагностических методов, который отражает реакцию органов кроветворения на воздействие различных физиологических и патологических факторов.

Оно включает определение содержания гемоглобина, количества эритроцитов, вычисление цветового показателя, подсчет числа лейкоцитов, тромбоцитов, определение лейкоцитарной формулы и скорости оседания эритроцитов (СОЭ).

Общий анализ крови является основой диагностики многих известных заболеваний. По изменению его показателей может быть установлен окончательный диагноз и назначено соответствующее лечение.

Общеклиническое исследование крови:

• позволяет оценить функциональное состояние организма;
• помогает определить природу патологического процесса (заболевания крови, воспалительный процесс, гнойно-септическое состояние, специфический иммунный процесс);
• дает возможность провести диагностику анемии;
• помогает оценить тяжесть течения и активность острого процесса, определить обострение хронического заболевания, а также развитие осложнений;
• позволяет контролировать эффективность проводимой терапии;
• помогает прогнозировать ход патологического процесса.

Но, чтобы получить точный и достоверный результат исследования, перед сдачей крови на исследование следует соблюдать определенные правила подготовки. Ведь на оцениваемые показатели кроме патологических факторов влияют:

• физиологические и конституциональные особенности человека (пол, возраст, расовая принадлежность);
• прием пищи перед сдачей биологического материала (голодание, злоупотребление жареным или сладким);
• физическая и эмоциональная нагрузки;
• природные изменения гормонального фона (фазы менструального цикла, беременность, менопауза);
• погодные и климатические условия;
• различные химические и физические факторы (лекарства, химические средства, ионизирующая радиация);
• положение пациента в момент взятия материала.

Для того, чтобы сдать кровь для проведения общеклинического анализа специальная подготовка не нужно. Достаточно придерживаться общих требований – посетить отделение лаборатории в утренние часы и натощак.

Точность результатов исследования зависит не только от подготовки пациента к процедуре, но и от техники забора крови. Взятие крови из вены традиционным способом, то есть с помощью обычного шприца, приводит к следующим проблемам:

• длительное время манипуляции;
• контакт крови с окружающей средой;
• свертывание крови в игле;
• разрушение эритроцитов;
• сложность соблюдения соотношения количества крови и реагента.

Также забор венозной крови с помощью шприца не исключает контакта медперсонала с биоматериалом пациента, а поэтому представляет опасность для здоровья.

Оптимальным решением для взятия венозной крови стали вакуумные системы, используемые в МЛ ДІЛА.

Кровь в вакутейнер набирается за счет вакуума в пробирке, а точно рассчитанное на этапе производства давление обеспечивает оптимальное соотношение количества крови к реагенту.

Преимущества использования вакутейнера:

• во время забора материала полностью исключается контакт медицинского персонала с кровью пациента;
• стандартизированный процесс забора крови и подготовки проб;
• транспортировка и аналитическое исследование безопасно, так как пробирки герметичны, изготовлены из небьющихся материалов;
• простая идентификация и маркировка проб по видам исследований, благодаря цветному кодированию крышек, что исключает перепутывание пробирок;
• манипуляция забора крови выполняется быстро и почти безболезненно.

Расшифровка показателей общего анализа крови осуществляется в несколько этапов. Медицинская лаборатория ДІЛА оснащена современным оборудованием, на котором производится автоматическое определение основных параметров.

Результат выдается на бланке, в котором оцениваемые параметры указываются рядом с референсными нормами, принятыми в лаборатории.

Для верной оценки показателей необходимо обратиться к врачу, который сможет сопоставить полученные в лаборатории результаты с клинической картиной и сделать правильный вывод о состоянии пациента.

Источник: https://dila.ua/rus/news/032018-zagalnyj-analiz-krovi.html

Окраска

Окраска проводится стандартным методом. Перед этой процедурой изготовленный мазок крови высушивается на воздухе посредством покачивания предметного стекла, что дает возможность избегать формирования неокрашенной светлой зоны в центре эритроцитов. Благодаря этому соответственно исключается ошибочная интерпретация гипохромии.

Могут быть и прочие артефакты окраски. К примеру, окрашивание по Райту предоставляет преципитат. Подобное происходит тогда, когда краску через какой-то период не обновили, предметное стекло длительное время находилось в окрашивающем растворе или плохо было отмыто. В результате накопление красителя интерпретировать можно в качестве наличия в крови паразитов и бактерий. Кроме этого, окрашивание мазка с морфологией клеток может быть изменено в рамках контакта предметного стекла с паром формалина. Обычно красятся образцы по методу Романовского на основе метиленового синего и эозина.

Классическая окраска мазков крови, как правило, значительно отличается от быстрой. В последние время подобные методики имеют свои преимущества, так как они являются устойчивыми к вариациям кислотности растворов и формированию депо вещества. Но, тем не менее, они являются менее эффективными в целях выявления полихроматофилов и плохо меняют цвет гранул базофилов и мастоцитов.

Для того чтобы получить визуальную специфическую картину ретикулоцитов, требуется провести окрашивание с новым метиленовым синим. В пластиковых пробирках кровяную каплю перемешивают с двумя элементами NBM. Пробирка оставляется при комнатной температуре на десять минут. Маленькая капля после перемешивания помещается на предметное стекло и размазывается точно так же, как во время выполнения мазка. Затем предметное стекло быстро высушивается на воздухе и исследуется под микроскопом с огромным увеличением.

Алгоритм забора крови из пальца

Рейтинг: 3 372
При обращении к врачу в случае заболевания или для прохождения профилактического осмотра, назначают ряд лабораторных обследований, среди которых наиболее распространенным является исследование крови из пальца. Наиболее часто назначают общий анализ крови. Принципы этого исследования хорошо известны всем еще с детства. Пациенты, как правило, знают, для чего берут кровь из пальца для данного обследования. Обследование следует осуществлять с утра на голодный желудок. Данная процедура очень легкая, результат известен уже на другой день.

Назначение

Кровь из пальца берут для того, чтобы:

• определить состав клеток крови во время общего обследования;
• экспресс – диагностирование показателей содержания сахара в крови (в этом случае используют специальный прибор – глюкометр);
• экспресс – тест выявления уровня содержания общего холестерина (в последующем для детализации результатов требуется сдача венозной крови).

Подготовка

• Для получения более точного результата общий анализ крови берут из пальца с утра (до 10 часов).
• Кровь сдают натощак, последний раз можно поесть за 12 часов до забора крови. Из жидкостей в день исследования допускается пить только чистую воду.
• В течение нескольких дней до обследования рекомендуется исключить из рациона очень жирные продукты, а также алкоголь.
• Также за несколько дней до анализа крови из пальца следует временно отказаться от тяжелых физических нагрузок, постараться меньше волноваться.
• Непосредственно перед забором крови не разрешается курить.

Проведение

Существует два варианта проведения общего анализа крови:

• В случае первого лаборанты делают сокращенный анализ, который отображает только уровень содержания гемоглобина, форменных элементов крови и определяется скорость оседания эритроцитов, то есть СОЭ.
• Второй вариант подразумевает проведение развернутого анализа крови, который освещает также такие показатели, как гематокрит, среднее содержание гемоглобина в эритроците, количественный и качественный состав лейкоцитов, средний объем эритроцита и другие.

При назначении клинического обследования у пациента может возникнуть вопрос относительно того, чем прокалывают палец, когда берут кровь из него. В связи с возросшим во всем мире риске инфицировании заболеваниями, передающимися через кровь, в первую очередь, гепатитом и СПИДом, в современных лабораториях на протяжении последних десятилетий для забора биологического материала используют только одноразовый инструментарий, который извлекается из упаковки, вскрываемой на глазах у пациента.

Для непосредственного прокола пальца используют такие приспособления, как скарификаторы, стерильные иглы, ланцеты для прокола пальца. В случае использования двух первых прокол доставляет более болезненные ощущения.

На сегодняшний день, лаборанты все более склоняются в пользу применения современных автоматических приборов, в которых ланцет размещается внутри пластмассового корпуса.

Одноразовый скарификатор

Преимущества скарификаторов заключаются в безопасности, меньших размерах иглы (способствует снижению ощущений боли), удобство применения, автоматизация процесса (благодаря пусковому устройству исключается случайный выход лезвия) а также психологический фактор (пациент, не видя иглы, меньше волнуется).

Правила забора

• Подготавливается необходимое для проведения процедуры оснащение (стерильный материал, 70% раствор этилового спирта либо спиртсодержащие антисептики, одноразовый инструментарий, промаркированные предметные стекла и пробирки).
• Проводится психологическая подготовка пациента, в ходе которой ему объясняется суть и методика последующего обследования и получается согласие на ее проведение.
• Пациента сажают напротив медицинского работника, осуществляющего забор крови, и просят положить руку на стол.
• Подушечку пальца, из которого берут кровь, обрабатывают антисептиком и просушивают сухим стерильным ватным шариком.
• Одноразовым инструментом (скарификатор, игла или ланцет) осуществляют прокол на глубину 2 – 3 мм.
• Первую каплю крови снимают сухим стерильным ватным диском.
• Для проведения анализа используют последующие десять капель крови, которые лаборант собирает самотеком или набирает в специальный переходник. Сдавливать палец во время выполнения процедуры нельзя, поскольку это приведет к смешиванию крови с тканевыми жидкостями, и полученные результаты анализа крови могут быть недостоверными. Кровь помещается в специальную промаркированную пробирку с реактивом.
• После проведения процедуры к месту укола прикладывают стерильный ватный шарик, смоченный антисептиком, и удерживают его в течение 5 – 7 минут до полной остановки кровотечения.

Следует отметить, что принципы забора крови из пальца одинаковы для взрослых и у детей старше 1 года. В проведении данной процедуры у новорожденных и детей до 1 года жизни существуют некоторые особенности.

Правила забора капиллярной крови

Заключаются они в выборе места прокола (его делают на боковых участках пятки) и в выборе инструмента, каким прибором брать кровь у грудничков. При работе с данным контингентом пациентов используют автоматические стерильные ланцеты для снижения ощущений боли у ребенка во время прокалывания кожи и забора крови с пальца.

Почему безымянный палец левой руки

Может возникнуть вполне закономерный вопрос, почему для проведения клинического исследования капиллярную кровь берут преимущественно из безымянного пальца левой руки, ведь кровь везде в организме одинаковая.

Действительно, лаборанты используют для данного анализа кровь из безымянного, среднего либо указательного пальцев. Связано это с анатомическими особенностями человеческого организма. В момент прокола всегда присутствует риск возможного инфицирования. При этом внутренние оболочки таких пальцев, как большой и мизинец, прямо соединяются с внутренними оболочками кисти.

При заражении инфекция из этих пальцев довольно быстро попадет в них, а далее в короткие сроки распространится и на всю руку. Оболочки же тех пальцев, которые выбирают лаборанты, являются изолированными и, в случае заражения, инфекция еще некоторое время будет находиться только в них, что дает возможность быстрого ее подавления. Кроме того, преимущество безымянного пальца заключается в том, что он является самым «нерабочим» на кисти. В результате этого кожа на его подушечке более тонкая, что снижает болезненные ощущения у пациента к минимуму.

Автоматизированный скарификатор

Также, поскольку безымянный палец менее других двигается, ранка после прокола затягивается на нем быстрее, что также служит профилактикой инфицирования.

Расшифровка

Расшифровкой общего анализа крови занимается лечащий врач. Конечно, при существующем сегодня беспрепятственном доступе к общим таблицам нормальных показателей, можно попытаться и самому интерпретировать полученные данные. Однако делать этого не следует, поскольку специалист, назначивший данное обследование оценивает не просто уровень содержания того или иного параметра, но включает их в общую клиническую картину и сопоставляет с другими симптомами, имеющимися у пациента:

• Гемоглобин, Hb – у женщин нормальный показатель варьирует в диапазоне 120 – 140 г/л, у мужчин – 130 – 160 г/л. Повышение уровня гемоглобина может указывать на дегидратацию организма, различные кишечные инфекционные заболевания, пороки сердца. Понижение свидетельствует о развитии анемии.
• Цветовой показатель крови, ЦП – нормальный уровень составляет 0,85 – 1,15%. Понижение уровня цветового показателя крови говорит о развитии анемии, повышение может сопровождать нарушение синтеза фолиевой кислоты, онкологические процессы.
• Эритроциты – у женщин норма находится в пределах 3,7 – 4,7 г/л, у мужчин – 4 – 5 г/л. Повышение содержания эритроцитов может наблюдаться как при незначительных нарушениях (диарея, ожог, употребление мочегонных препаратов), так и при развитии онкологических заболеваний и патологий почек. Низкий уровень указывает на развитие анемии, потери крови, образование отеков.
• Скорость оседания эритроцитов, СОЭ – нормальный показатель у женщин – до 20 мм/час, у мужчин – до 15 мм/час. Повышенные показатели наблюдаются при воспалительных и аутоиммунных патологических процессах, онкологических заболеваниях, нарушениях в работе эндокринной системы, почек и печени. Снижение показателей характерно при недостаточности кровообращения.
• Лейкоциты – вне зависимости от половой принадлежности норма составляет 4 – 9*109/литр. Повышение уровня лейкоцитов в крови отмечается при инфекционных процессах, понижение сопровождает развитие онкологических заболеваний, гепатитов.
• Тромбоциты – отвечают за свертываемость крови, в норме – 180 – 320*109/литр. Высокие показатели тромбоцитов отмечаются при ревматоидном артрите, различных формах туберкулеза, онкологии. Понижение уровня тромбоцитов содержания сопровождает аутоиммунные заболевания, анемии.

sostavkrovi.ru

Систематическое исследование

В рамках оценки крайне важно руководствоваться единой схемой исследований. Микроскопия мазка крови, который выполнен одним тонким слоем с округлостью на кончике, утолщается к своему основанию. Клетки оцениваются на тонком рисунке, так как толстый несет в себе мало сведений. При малом увеличении краевая часть мазка, преимущественно его округлый конец, обычно обследуется на выявление агрегата тромбоцитов либо атипичных широких клеток (лифмобласты или дендритные элементы).

Слой может обладать формой зигзагов или косички, что позволяет достаточно четко наблюдать различные кровяные клетки в рамках направленного исследования по алгоритму APEL, где A предполагает другие атипичные элементы с паразитами, Р обозначает тромбоциты, Е говорит об эритроцитах, а L о лейкоцитах.

Исследование мазков крови является довольно распространенной методикой, позволяющей быстро продиагностировать различные часто встречающиеся нарушения. Главными условиями эффективного применения этого метода выступает строгое соблюдение техники исследования мазка с систематическим анализом с соблюдением алгоритма процедуры.

Целесообразность проведения анализа

Имеется достаточно большой круг заболеваний, а вместе с тем и расстройств, на фоне которых могут меняться свойства клеток, которые циркулируют в кровяном русле. В норме в этот биоматериал из костного мозга проникают только зрелые элементы, но при ряде патологий, например при лейкозе, в него могут попадать незрелые аналоги в виде бластов. При некоторых болезненных состояниях, к примеру, при массивных инфекциях, в лейкоцитах появляться могут характерные примеси, сами клетки становятся атипичными, как, например, при инфекционных мононуклеозах.

При дефиците железа или витамина B12, при врожденном нарушении синтеза гемоглобина изменяться могут свойства и внешний вид эритроцитов. Обнаружение в мазке подобных патологических клеток в чрезмерном количестве дает возможность заподозрить вызвавшую их патологию и назначить пациенту дополнительное обследование. Мазок крови регулярно может назначаться людям с онкологическими недугами костного мозга или лимфоузлов в рамках наблюдения за динамикой и контроля над эффективностью терапии.

Алгоритм проведения общего анализа крови

Работа добавлена на сайт samzan.ru: 2015-07-05
Билет №13

АЛГОРИТМ ПРОВЕДЕНИЯ ОБЩЕГО АНАЛИЗА КРОВИ

1. Подготовка рабочего места для исследования.

На двоих студентов для забора крови должны быть подготовлены:

Реактивы:

1. спирт этиловый 70%;
2. 5% раствор цитрата натрия;
3. физраствор,
4. трансформирующий раствор;
5. 5% раствор уксусной кислоты.

Оборудование: вата; стерильные скарификаторы; стерильные капилляры Панченкова; капилляры Сали; предметные стекла с лункой; предметные стекла; шлифованное стекло; штатив с пробирками; штатив Панченкова; градуированные пипетки; резиновые груши; емкости с дезраствором для использованной ваты, капилляров, скарификаторов.

2. Подготовительная работа

1. Промывают капилляр Панченкова 5% раствором цитрата натрия.
2. Набирают цитрат натрия в капилляр Панченкова до метки «75» и выдувают

его в лунку предметного стекла (или в пробирку).

1. Разливают реактивы по пробиркам: в одну пробирку вносят 4мл физраствора; в другую – 5мл трансформирующего раствора; в третью – 0,4 мл 5% раствора уксусной кислоты.

3. Забор крови из пальца

1. Делают прокол кожи.
2. После удаления первой капли делают 2 мазка.
3. Набирают из пальца кровь в капилляр Панченкова выше метки «0» («К») – почти полный капилляр.
4. Спускают кровь из капилляра Панченкова до метки О «К» на предметное

стекло – она будет использована для определения содержания гемоглобина,

подсчета количества эритроцитов и лейкоцитов.

1. Остальную кровь из капилляра Панченкова спускают в цитрат натрия и

тщательно перемешивают кровь с цитратом.

1. Капилляром Сали с предметного стекла набирают 0,02 мл цельной крови и вносят её в физраствор – для подсчета эритроцитов.
2. 2-3 промывают капилляр Сали физраствором.
3. Перемешивают кровь с физраствором.
4. Капилляром Сали с предметного стекла набирают 0,02 мл цельной крови и вносят её в трансформирующий раствор – для определения концентрации гемоглобина.
5. 2-3 промывают капилляр Сали трансформирующим раствором.
6. Тщательно перемешивают содержимое пробирки и замечают время – 20

минут.

1. Капилляром Сали с предметного стекла набирают 0,02 мл цельной крови и вносят её в раствор уксусной кислоты – для подсчета количества лейкоцитов.
2. 2-3 промывают капилляр Сали раствором уксусной кислоты.
3. Тщательно перемешивают содержимое пробирки.
4. Набирают смесь крови с цитратом в капилляр Панченкова без пузырьков воздуха до метки «0» и ставят капилляр в штатив Панченкова на 1 час.

4. Проведение исследований

1. Через 20 минут колориметрируют смесь крови с трансформирующим раствором на ФЭКе или МИНИГЕМе.
2. При использовании ФЭКа концентрацию гемоглобина определяют по калибровочному графику.
3. Готовят к работе счетную камеру – притирают к камере Горяева покровное стекло так, чтобы появились радужные кольца.
4. Тщательно встряхивают пробирки с кровью, разведенной физраствором и уксусной кислотой.
5. Заполняют одну сетку камеры Горяева смесью крови и физраствора (для подсчета эритроцитов), а другую – кровью с уксусной кислотой (для подсчета лейкоцитов).
6. Оставляют камеру в горизонтальном положении на 1 минуту для оседания клеток крови.
7. Готовят микроскоп к работе: настраивают свет, конденсор опускают.
8. Подсчитывают под микроскопом (окуляр 10х или 15, объектив 8х) в одной сетке камеры Горяева эритроциты в пяти больших разграфленных квадратах по диагонали сетки, а затем, в другой сетке счетной камеры – лейкоциты в 100 больших не разграфленных квадратах.
9. По формулам рассчитывают количество эритроцитов и лейкоцитов в 1л крови
10. Через 1 час снимают показания СОЭ.

2. Определите количество белка в моче пиррогаллоловым методом. Принцип метода, реактивы, ход определения, расчет.

Ответ: Принцип: При взаимодействии белка с красителем пирогаллоловым красным образуется окрашенный комплекс, интенсивность поглощения которого на длине волны 600нм увеличивается с ростом концентрации белка в пробе.

Реактивы поставляются в наборе: раствор пирогаллолового красного и молибдата натрия в сукцинатном буфере, калибровочные растворы белка 1 г/л и 0,2г/л.

Специальное оборудование: фотоэлектроколориметр или специальный фотометр МИКРОЛАБ-600 для определения концентрации белка.

Ход исследования. Приготовить пробы смешиванием компонентов в количестве, указанном в таблице 7.

Приготовление проб

После смешивания компонентов пробы инкубируют 15 минут при комнатной температуре. Окраска стабильна в течении 30 минут после завершения инкубирования. Измеряют оптическую плотность опытных проб и калибровочной пробы в кюветах на 1см при длине волны 600нм против холостой пробы.

Расчет ведут по формуле:

C=Dобразец , где С – концентрация белка в пробе,

Dстандарт D – образец- оптическая плотность опытной пробы

D – стандарт-оптическая плотность калибровочной пробы.

Если результат определения более 1,9г/л, следует развести исследуемый образец в 2 или более раза дистиллированной водой, повторить тест и результат умножить на степень разведения. Если концентрация белка менее 0,07г/л и требуется уточнение результата, повторить анализ с калибровочной пробой 0,2г/л при соотношении образец/реагент=1:10

3. У больного после приступа удушья выделилось небольшое количество слизистой мокроты.

1. Перечислите отклонения от нормы в анализе.
2. Патология, для которой характерна такая картина
3. Признаки, указывающие на данную патологию

Ответ:

– Бронхиальная астма.

– Характеристика мокроты:

1. слизистый характер, стекловидная, вязкая;
2. при микроскопии обнаружены эозинофилы, эпителиальные клетки, спирали Куршмана, кристаллы Шарко-Лейдена.

Билет №14

2. Найдите в окрашенном препарате крови «бластные» клетки. Морфология «бластных» клеток. Картина крови при острых лейкозах.

Ответ: -Бластные клетки – недифференцированные клетки.

По морфологическим, цитохимическим и иммунофенотипическим признакам бластные клетки могут быть отнесены к гранулоцитарному, лимфоидному или эритроидному ряду.

От других клеток крови и костного мозга бластные клетки отличаются строением ядра. Хроматин у них состоит из нитей равномерного калибра и окраски, благодаря чему структура ядра напоминает тонкое кружево. Другой характерный признак бластной клетки – наличие крупных ядрышек (2-5 на одну клетку).

Миелобластам и монобластам свойственны такие признаки, как азурофильные гранулы, палочки Ауэра , складчатость ядерной оболочки.

Бластные клетки – наиболее “молодые” элементы крови.

-Картина крови и костного мозга Для острого лейкоза типична триада признаков: лейкоцитоз, появление большого числа бластных клеток и лейкемический провал (в периферической крови присутствуют бласты и зрелые клетки белой крови, без промежуточных стадий созревания).

В начале острого лейкоза может отмечаться анемия, цветовой показатель равен 1 (нормохромная анемия) или 1,2–1,3 (гиперхромная анемия). Среди эритроцитов много макроцитов. Количество тромбоцитов снижено или нормально. При остром лейкозе костный мозг содержит десятки процентов бластных клеток.

Основным диагностическим признаком является однообразная картина костномозгового кроветворения. По мере прогрессирования острого лейкоза лейкозные клетки становятся более уродливыми.

3. Оцените микроскопическую картину кала:

1. Перечислите отклонения от нормы в анализе.
2. Патология, для которой характерна такая картина
3. Признаки, указывающие на данную патологию

Ответ:

1. Отклонения от нормы:

1. переваримая клетчатка +++,
2. крахмал +,
3. йодофильная флора +++ (в норме этих элементов в кале нет).

2. Бродильная диспепсия.

3. Наличие йодофильной флоры, перевар

Источник: https://samzan.ru/161001